糖原磷酸化酶b（Glycogen phosphorylase b，GPb）试剂盒说明书
分光光度法50管/24样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
糖原磷酸化酶（Glycogen phosphorylase，GP，EC 2.4.1.1)）是糖原分解代谢的关键酶，使糖原分子从非还原端逐个断开α-1，4-糖苷键移去葡萄糖基，释放1-磷酸葡萄糖，直至临近糖原分子α-1，6-糖苷键分支点前4个葡萄糖基处。GP分为有活性的糖原磷酸化酶a（GPa）和无活性的糖原磷酸化酶b（GPb）两种形式。GPb在一定浓度的腺苷酸（5，-AMP）存在下可被激活。
测定原理：
GP催化糖原和无机磷产生葡萄糖残基生成糖原和1-磷酸葡萄糖，磷酸葡萄糖变位酶和6-磷酸葡萄糖脱氢酶进一步依次催化NADP还原生成NADPH，在340nm下测定NADPH上升速率，即可反映GP活性。添加一定浓度的腺苷酸（5，-AMP）时测定GP（GPa和GPb）活性，未添加腺苷酸（5，-AMP）时测定GPa活性，GP活性－GPa活性得到GPb活性。
组成：
|
产品名称
|
GCS005-50T/24S
|
Storage
|
|
提取液：液体
|
60ml
|
4℃
|
|
试剂一：液体
|
40ml
|
4℃
|
|
试剂二：粉剂
|
1瓶
|
-20℃
|
|
试剂三：粉剂
|
1支
|
-20℃
|
|
试剂四：粉剂
|
1支
|
-20℃
|
|
试剂五：粉剂
|
1支
|
-20℃
|
|
说明书
|
一份
|
自备仪器和用品：
紫外分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1ml石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
样本的前处理：
按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
测定步骤：
1、 分光光度计预热30min以上，调节波长至340nm，蒸馏水调零；
2、 工作液的配制：临用前将试剂二转移到试剂一中混合溶解待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
3、 试剂三的配制：临用前在试剂三瓶中加入2.5ml蒸馏水充分溶解待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
4、 试剂四的配制：临用前在试剂四瓶中加入2.5ml蒸馏水充分溶解待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
5、 试剂五的配制：临用前在试剂五管中加入1.25ml蒸馏水充分溶解待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
6、 将工作液、试剂三、试剂四和试剂五置于37℃预热5分钟；
7、 1ml石英比色皿中加入50μl样本、50μl试剂三、50μl试剂四、50μl蒸馏水和800μl工作液，立即混匀，记录340nm处5min后的A1和10min后的吸光值A2，计算ΔAGPa=A2-A1。
8、 在1ml石英比色皿中加入50μl样本、50μl试剂三、50μl试剂四、50μl试剂五和800μl工作液，立即混匀，记录340nm处5min后的A3和10min后的吸光值A4，计算ΔAGP=A4-A3。
注意：由于每个样本需要同时测一个GP（GPa和GPb）活性和一个GPa活性，因此本试剂盒50管测24个样本。
GPb活性计算：
（1）按样本蛋白浓度计算
单位定义：每mg组织蛋白每分钟产生1nmol NADPH定义为一个酶活力单位。
GPb（nmol/min/mg prot）＝[(ΔAGP－ΔAGPa)×V反总÷（ε×d）×109]÷(V样×Cpr) ÷T=643×(ΔAGP－ΔAGPa)÷Cpr
（2）按样本鲜重计算
单位定义：每g组织每分钟产生1nmol NADPH定义为一个酶活力单位。
GPb（nmol/min/g 鲜重）＝[(ΔAGP－ΔAGPa)×V反总÷（ε×d）×109]÷(W ×V样÷V样总)÷T=643×(ΔAGP－ΔAGPa)÷W
V反总：反应体系总体积，1×10-3 L；ε：NADPH摩尔消光系数，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V样：加入样本体积，0.05 ml；V样总：加入提取液体积，1 ml；T：反应时间，5 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g。
