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6-磷酸葡萄糖脱氢酶(6PGDH)检测试剂盒(分光光度法 50T/48S)
AE015
Glucose 6-Phosphate Dehydrogenase (G6PDH) Activity Assay Kit(Spectrophotometry)
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AE015-50T/48S 50T/48S ¥862.00

6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶(6 - phosphogluconate dehydrogenase6-PGDH)说明书

                                                   分光光度法50/48

正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定                                             

测定意义:

磷酸戊糖途径途径中6-磷酸葡萄糖脱氢酶(G6PDH)和6PGDH依次催化NADPH合成,与能量的平衡、生长速率和细胞活力等密切相关。此外,6PGDH逆境生理中具有重要作用。

测定原理:

6PGDH催化6-磷酸葡萄糖酸和NADP+生成NADPHNADPH340 nm有特征吸收峰,而NADP+没有;通过测定340nm吸光度增加速率,计算6PGDH活性。

组成:

产品名称

AE015-50T/48S

Storage

提取液:液体

60ml

4℃

试剂一:液体

47.5ml

4℃

试剂二:粉剂

1

-20℃避光

试剂粉剂

1

-20℃

说明书

一份

 

自备仪器和用品:

紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调式移液枪、1ml石英比色皿和蒸馏水。

粗酶液提取

1、细菌、细胞或组织样品的制备:

细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(ml)为1000~50001的比例(建议2000万细菌或细胞加入1ml提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

组织:按照组织质量(g):提取液体积(ml)15~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1ml提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

2、血清(浆)样品:直接检测。

 

测定步骤:

1. 分光光度计预热30min,调节波长到340 nm,蒸馏水调零。

2. 将试剂二和试剂三转移至试剂一中充分溶解;在37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴10min以上;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

3. 1ml石英比色皿,依次加入50μl样本和950μl试剂一,于340nm处测定3min内吸光值变化,第10 s吸光值记为A1,第190s吸光值记为A2△A=A2-A1

注意:空白管只需要做一次。

6PGDH活性计算公式

1、血清(浆)6PGDH活力的计算:

单位的定义:每ml血清(浆)每分钟生成1 nmolNADPH定义为一个酶活力单位。

6PGDHnmol/min/ml)=[ΔA×V反总÷ε×d×109]÷V÷T=1071.8×ΔA

2、组织、细菌或细胞中6PGDH活力的计算:

1)按样本蛋白浓度计算:

单位的定义:每mg组织蛋白每分钟生成1 nmol NADPH定义为一个酶活力单位。

6PGDHnmol/min /mg prot)=[ΔA×V反总÷ε×d×109]÷(V×Cpr) ÷T=1071.8×ΔA÷Cpr

2)按样本鲜重计算:

单位的定义:每g组织每分钟生成1 nmol NADPH定义为一个酶活力单位。

6PGDHnmol/min /g 鲜重)=[ΔA×V反总÷ε×d×109]÷(W× V÷V样总) ÷T=1071.8×ΔA÷W

3)按细菌或细胞密度计算:

单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟生成1 nmol NADPH定义为一个酶活力单位。

6PGDHnmol/min /104 cell)=[ΔA×V反总÷ε×d×109]÷(2000×V÷V样总) ÷T=0.536×ΔA

V反总:反应体系总体积,1×10-3 LεNADPH摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cmd:比色皿光径,1cmV样:加入样本体积,0.05 mlV样总:加入提取液体积,1 mlT:反应时间,3 minCpr:样本蛋白质浓度,mg/mlW:样本质量,g2000:细菌或细胞总数,2000万。

 

象形图
警示语
Class
警告声明
UNub
危险声明
Packing Group
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