内切-β-1，4-葡聚糖酶（Cx）活性测定试剂盒说明书
分光光度法 50管/24样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
Cx（EC3.2.1.4）存在于细菌、真菌和动物体内，是纤维素酶系的组份之一，Cx主要作用于非晶态纤维素和水溶性纤维素衍生物，随机水解糖苷键，将其分解成葡萄糖、纤维二糖、纤维三糖和其他寡聚体。
测定原理：
采用3,5－二硝基水杨酸法测定Cx催化羧甲基纤维素钠降解产生的还原糖的含量。
组成：
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产品名称
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GMS046-50T/24S
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Storage
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提取液：液体
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50ml
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4℃
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试剂一：液体
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15ml
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4℃
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试剂二：液体
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60ml
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4℃
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说明书
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一份
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自备仪器和用品：
可见分光光度计、水浴锅、离心机、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
样品测定的准备：
1、细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：提取液体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1ml提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、组织：按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
3、血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤：
1、 分光光度计预热30min以上，调节波长至540nm，蒸馏水调零。
2、加样表（在EP管中依次加入下列试剂）：
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试剂名称（μl）
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测定管
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对照管
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样本
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50
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50
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试剂一
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500
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蒸馏水
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500
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混匀，37℃准确水浴2h
混匀， 90℃水浴10min（盖紧，防止水分散失），冷却后，测540nm下吸光值A，计算ΔA=A测定管-A对照管。每个测定管需设一个对照管。
Cx活性计算
1、标准条件下测定回归方程为y = 6.4078x - 0.0673；x为标准品浓度（mg/ml），y为吸光值。
2、血清（浆）Cx活力的计算
单位的定义：每ml血清（浆）每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx活力(μg /min/ml)= [1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V反总]÷V样÷T
=14.305×(ΔA+0.0673)
3、细胞、细菌和组织中Cx活力的计算
（1）按照蛋白浓度计算
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx活力(μg /min/mg prot)=[ [1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V反总]÷(V样×Cpr) ÷T
=14.305×(ΔA+0.0673) ÷Cpr
（2）按样本鲜重计算
单位的定义：每g组织每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx活力(μg /min /g鲜重)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V反总]÷(W× V样÷V样总) ÷T
=14.305×(ΔA+0.0673) ÷W
（3）按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx活力(μg /min /104 cell)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V反总]÷(500×V样÷V样总) ÷T
=0.0286×(ΔA+0.0673)
1000：1mg/ml=1000ug/ml；V反总：反应体系总体积，0.55ml； V样：加入样本体积，0.05 ml；V样总：加入提取液体积，1 ml；T：反应时间，120 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500万。
