滤纸酶（Filter paper Activity，FPA）试剂盒说明书
分光光度法50管/24样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
纤维素酶是由微生物产生的多组分的酶系，能水解纤维素β-1,4葡萄糖苷键生成葡萄糖，研究滤纸酶活力对纤维素酶的研究具有非常重要的意义。
测定原理：
滤纸酶水解滤纸产生的还原糖能与3,5-二硝基水杨酸生成红棕色氨基化合物，在540nm处有最大光吸收，在一定范围内反应液颜色深浅与还原糖的量成正比，可测定计算得滤纸酶的活力。
组成：
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产品名称
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GMS062-50T/24S
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Storage
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试剂一：液体
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15ml
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4℃
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试剂二：液体
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40ml
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4℃
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滤纸条
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50mg×50条
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说明书
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一份
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自备仪器和用品：
天平、研钵、低温离心机、可见分光光度计、1 ml玻璃比色皿、恒温水浴锅。
酶液提取：
1. 组织：按照质量（g）：蒸馏水体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g，加入1ml蒸馏水）加入蒸馏水，冰浴匀浆后于4℃，12000rpm离心10min，取上清置于冰上待测。
2. 细胞：按照细胞数量（104个）：蒸馏水体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1ml提取液），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后4℃，12000rpm离心10min，取上清置于冰上待测。
3. 培养液或其它液体：直接检测。
测定操作：
1. 根据样本数量取两倍数量的滤纸条和Ep管，每支Ep管中放入一个卷状滤纸条（注意要放入底部），作为底物。
2. 对照管：取200μl灭活的酶液，加入500μl试剂一，充分混匀，再加入放有滤纸条的Ep管中，标注为对照管。
3. 测定管：取200μl酶液，加入500μl试剂一，充分混匀，再加入放有滤纸条的Ep管中，标注为测定管。
4. 对照管和测定管同时置于50℃水浴锅中反应30min。
5. 加入800μl试剂二，沸水浴5min，自来水冷却后取1ml于1ml玻璃比色皿中测定540nm处吸光值，分别记为A对照管和A测定管。
酶活性计算公式：
标准曲线：y = 0.2805x - 0.0255，R2 = 0.9991
（1）按照蛋白浓度计算
酶活性定义：在50℃，pH4.6条件下，每毫克蛋白每分钟分解滤纸产生1mg葡萄糖所需的酶量为一个酶活力单位。
FPA（U/mg prot）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反总÷（V样×Cpr）÷T
= 0.891×（△A+0.0255）÷ Cpr
（2）按照样本质量计算
酶活性定义：在50℃，pH4.6条件下，每克组织每分钟分解滤纸产生1mg葡萄糖所需的酶量为一个酶活力单位。
FPA（U/g 鲜重）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反总÷（W×V样÷V样总）÷T
= 0.891×（△A+0.0255）÷ W
（3）按液体体积计算
酶活性定义：在50℃，pH4.6条件下，每毫升培养液每分钟分解滤纸产生1mg葡萄糖所需的酶量为一个酶活力单位。
FPA（U/ml）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反总÷V样÷T
= 0.891×（△A+0.0255）
（4）按细胞数量计算
酶活性定义：在50℃，pH4.6条件下，每104个细胞每分钟分解滤纸产生1mg葡萄糖所需的酶量为一个酶活力单位。
FPA（U/104cell）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V反总÷（V样×细胞数量（万个）÷V样总）÷T
= 0.891×（△A+0.0255）÷ 细胞数量（万个）
V反总：反应总体积，1.5ml，V样：反应体系中加入样本体积，0.2ml；V样总：加入提取液体积，1ml；Cpr：样本蛋白浓度，mg/ml；W：样本质量，g；T：反应时间，30min
注意事项：
1. 用干净的镊子取出滤纸条，带手套卷成卷放入Ep管底部。
2. 样本灭活时保证同一批样本处理时间一致，建议沸水浴十分钟。
3. 批量样本测定之前先做1-2个样本的预实验，若吸光值超过1.2，建议将样本用蒸馏水稀释后再进行测定，计算公式中乘以稀释倍数。
4. 显色后取检测液时注意枪头不要碰到滤纸条，以免带入毛状物，影响测定结果。
