还原型谷胱甘肽（reduced glutathione, GSH）试剂盒说明书
分光光度法 50管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
GSH是细胞内最主要的抗氧化巯基物质，在抗氧化、蛋白质巯基保护和氨基酸跨膜运输等中具有重要作用。还原型与氧化型比值（GSH/GSSG）是细胞氧化还原状态的主要动态指标。因此，测定细胞内GSH和GSSG含量以及GSH/GSSG比值，能够很好地反映细胞所处的氧化还原状态。
测定原理：
DTNB与GSH反应生成复合物，在412nm处有特征吸收峰；其吸光度与GSH含量成正比。
组成：
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产品名称
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GSH001-50T/48S
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Storage
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试剂一：液体
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1瓶
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4℃
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试剂二：液体
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1瓶
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4℃
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试剂三：液体
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1瓶
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4℃避光
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说明书
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一份
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自备仪器和用品：
可见分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、1ml玻璃比色皿和蒸馏水。
粗酶液提取：
1. 组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心10min，取上清置冰上待测。
2. 细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：试剂一体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1ml试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。
3. 血清等液体：直接测定。
GSH测定操作：
1. 分光光度计预热30min，调节波长到412 nm，蒸馏水调零。
2. 试剂二置于25℃（一般物种）或者37℃（哺乳动物）水浴中保温30min。
3. 空白管：取1ml玻璃比色皿，依次加入100μl蒸馏水，700μl试剂二，200μl试剂三，混匀静置2min后测定412 nm吸光度A1。
4. 测定管：取1ml玻璃比色皿，依次加入100μl上清液，700μl试剂二，200μl试剂三，混匀静置2min后测定412 nm吸光度A2。
注意：空白管只需要测定一次。
GSH含量计算公式：
GSH标准曲线公式：y=1.5 x（x为GSH浓度，μ mol /ml；y为吸光值）
GSH计算：
（1）按蛋白浓度计算
GSH（μ mol/ mg prot）=(A2－A1) ÷1.5×V样÷（V样×Cpr ）=0.667×(A2－A1) ÷Cpr
（2）按样本鲜重计算
GSH（μ mol/g鲜重）=(A2－A1) ÷1.5×V样÷(V样÷V样总×W)=0.667×(A2－A1) ÷W
（3）按细胞数量计算
GSH（μ mol /104 cell）=(A2－A1) ÷1.5×V样÷(V样÷V样总×细胞数量)=0.667×(A2－A1) ÷细胞数量
（4）按液体体积计算
GSH（μ mol/ ml）=(A2－A1) ÷1.5×V样÷V样 =0.667×(A2－A1)
V样总：上清液总体积，1 ml；V样：加入反应体系中上清液体积，100μl=0.1 ml；W：样品质量，g ；Cpr：上清液蛋白质浓度，mg/ml；
注意事项：
1. 试剂一中含有蛋白质沉淀剂，因此上清液不能用于蛋白浓度测定。
2. 最低检出限为0.01mmol/L。
