硫氧还蛋白氧化还原酶（thioredoxin reductase, TrxR）试剂盒说明书
分光光度法 50管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
TrxR是一种NADPH依赖的包含FAD结构域的二聚体硒酶，属于吡啶核苷酸-二硫化物氧化还原酶家族成员，与硫氧还蛋白以及NADPH共同构成了硫氧还蛋白系统。TrxR与GR活性类似，催化GSSG还原生成GSH，是谷胱甘肽氧化还原循环关键酶之一。
测定原理：
TrxR催化NADPH还原DTNB生成TNB和NADP+，TNB在412 nm有特征吸收峰，通过测定412nm波长处TNB的增加速率，即可计算TrxR活性。
组成：
|
产品名称
|
GSH013-50T/48S
|
Storage
|
|
试剂一：液体
|
90ml
|
4℃
|
|
试剂二：液体
|
5ml
|
4℃避光
|
|
试剂三：粉剂
|
1瓶
|
4℃
|
|
说明书
|
一份
|
试剂三：粉剂×1瓶，4℃保存。临用前加入5 ml蒸馏水溶解。
自备仪器和用品：
可见分光光度计、低温离心机、可调节移液器、1ml玻璃比色皿和蒸馏水。
粗酶液提取：
1. 组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心10min，取上清置冰上待测。
2. 细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：试剂一体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1ml试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。
3. 血清等液体：直接测定。
TrxR测定操作：
1. 分光光度计预热30 min，调节波长到412nm，用蒸馏水调零。
2. 试剂一在25℃（一般物种）或者37℃（哺乳动物）预热30min。
3. 测定管：取1ml玻璃比色皿，加入100μl试剂二，100μl试剂三，700μl试剂一，100μl上清液，迅速混匀后于412 nm测定10 s和310 s吸光度，记为A3和A4。△A测定管=A2-A1。
TrxR活性计算公式：
(1). 按蛋白浓度计算
活性单位定义：在25℃或者37℃中，每毫克蛋白每分钟催化1nmol DTNB还原为1个酶活单位。
TrxR（nmol/min /mg prot）=△A测定管÷ε÷d×V反总÷(Cpr×V样)÷T
= 147×△A测定管÷Cpr
(2). 按样本质量计算
活性单位定义：在25℃或者37℃中，每克样本每分钟催化1nmol DTNB还原为1个酶活单位。
TrxR（nmol/min /g鲜重）=△A测定管÷ε÷d×V反总÷(W×V样÷V样总)÷T
= 147×△A测定管÷W
（3）按细胞数量计算
活性单位定义：在25℃或者37℃中，每104个细胞每分钟催化1nmol DTNB还原为1个酶活单位。
TrxR（nmol/min/104 cell）=△A测定管÷ε÷d×V反总÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T
= 147×△A测定管÷ 细胞数量
（4）按液体体积计算
活性单位定义：在25℃或者37℃中，每毫升液体每分钟催化1nmol DTNB还原为1个酶活单位。
TrxR（nmol/min /ml）=△A测定管÷ε÷d×V反总÷V样÷T
= 147×△A测定管
ε：TNB在412nm处的微摩尔消光系数，0.0136 L/μ mol/cm；d：比色皿光径，1cm；V反总：反应体系总体积（L），1000μl=0.001 L；Cpr：上清液蛋白质浓度（mg/ml），需要另外测定；V样：加入反应体系中上清液体积（ml），100μl=0.1 ml；V样总：加入提取液体积，1ml；W，样本质量，g；T：反应时间（min），5 min。
注意事项:
1. 测定前须先取1～2个样做预实验，哺乳动物组织及血液制品TrxR活力测定时，一般须用蒸馏水稀释5倍左右；测定过程操作须迅速。
2. 试剂二和试剂三配制好后3天内使用完。
