脯氨酸脱氢酶（ Proline dehydrogenase，ProDH)试剂盒说明书
分光光度法 50管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
ProDH是存在于线粒体内的催化脯氨酸降解的关键酶。脯氨酸是分布最广泛的一种渗透物质，在胁迫条件下很多植物可以通过增加合成、减少降解而在体内累积大量脯氨酸，降低ProDH活性对于调节渗透平衡、防止渗透胁迫对植物造成伤害、清除自由基、保护细胞结构具有重要意义。
测定原理：
利用异硫氰酸甲酯检测ProDH催化的脱氢反应，600nm处吸光值的吸光值的变化反映酶活性的高低。
组成：
|
产品名称
|
AC011-50T/48S
|
Storage
|
|
提取液：液体
|
60ml
|
4℃
|
|
试剂一：液体
|
2ml
|
4℃
|
|
试剂二：液体
|
50ml
|
4℃
|
|
试剂三：粉剂
|
1瓶
|
4℃
|
|
试剂四：粉剂
|
1瓶
|
4℃
|
|
试剂五：粉剂
|
5瓶
|
4℃
|
|
说明书
|
1份
|
试剂三临用前加入8ml蒸馏水充分溶解待用，用不完的试剂4℃保存；
试剂四临用前加入8ml蒸馏水充分溶解待用，用不完的试剂4℃保存；
自备仪器和用品：
可见分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
粗酶液提取：
按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g样本，加入1ml提取液），进行冰浴匀浆，1500g 4℃离心15min，取上清液于一支新的EP管中，加入一滴试剂一（用10μl的枪头加入），涡旋混匀，冰浴放置30min后，16000g 4℃离心20min，取上清置冰上待测。
测定步骤：
1、分光光度计或酶标仪预热30min以上，调节波长至600nm，蒸馏水调零。
2、样本测定
（1）混合液的配制：首先将试剂三和试剂四配成溶液（见试剂的组成和配制），临用前根据用量按照试剂二（V）：试剂三（V）：试剂四（V）=7.2（ml）：0.9（ml）：0.9（ml）的比例充分混匀。（注意：现配现用，用多少配多少），置于30℃水浴5min；
（2）试剂五的配制：取试剂五一支，临用前加入1ml蒸馏水充分溶解待用，现配现用。
（3）1ml玻璃比色皿中加入175μl样本、75μl试剂五和750μl混合液，混匀，立即记录600nm处初始吸光值A1和10min后的吸光值A2，计算ΔA=A2-A1。
ProDH活性计算：
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位定义：每分钟每mg组织蛋白在每ml反应体系中使600nm处吸光值变化0.01为一个
酶活力单位。
ProDH（U/mg prot）=ΔA×V反总÷（V样×Cpr）÷0.01÷T =57.14×ΔA÷Cpr
（2）按样本鲜重计算：
单位定义：每分钟每g组织在每ml反应体系中使600nm处吸光值变化0.01为一个
酶活力单位。
ProDH（U/g 鲜重）=ΔA×V反总÷(W× V样÷V样总)÷0.01÷T =57.14×ΔA÷W
V反总：反应体系总体积，1ml； V样：加入样本体积，0.175ml；V样总：加入提取液体积，1 ml；T：反应时间，10 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g。
