NAD-苹果酸脱氢酶（NAD-MDH）试剂盒说明书
分光光度法 50管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
MDH （EC 1.1.1.37）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，线粒体中MDH是TCA循环的关键酶之一，催化苹果酸形成草酰乙酸；相反，胞浆中MDH催化草酰乙酸形成苹果酸。草酰乙酸是重要的中间产物， 连接多条重要的代谢途径。因此，MDH在细胞多种生理活动中扮演着重要的角色，包括线粒体的能量代谢、 苹果酸-天冬氨酸穿梭系统、活性氧代谢和抗病性等。根据不同的辅酶特异性，MDH分为NAD-依赖的MDH和NADP-依赖的MDH，细菌中通常只含有NAD-MDH，在真核细胞中，NAD-MDH分布于细胞质和线粒体中。
测定原理：
NAD-MDH催化NADH还原草酰乙酸生成苹果酸，导致340nm处光吸收下降。
组成：
|
产品名称
|
CE005-50T/48S
|
Storage
|
|
试剂一：提取液
|
60ml
|
4℃
|
|
试剂二：液体
|
50ml
|
4℃
|
|
试剂三：粉剂
|
2瓶
|
-20℃
|
|
试剂四：粉剂
|
2瓶
|
-20℃
|
|
说明书
|
一份
|
试剂三、粉剂×2支，-20℃保存；临用前加入300μl蒸馏水，充分溶解待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
试剂四、粉剂×2支，-20℃保存；临用前加入300μl蒸馏水，充分溶解待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
自备仪器和用品：
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1 ml石英比色皿和蒸馏水。
样本测定的准备：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：试剂一体积（ml）为1000~5000：1的比例（建议2000万细菌或细胞加入1ml试剂一），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml试剂一），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤：
1、 分光光度计预热30min以上，调节波长至340nm，蒸馏水调零。
2、 将试剂二在37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）水浴10min以上。
3、 操作表：
|
试剂名称（μl）
|
测定孔
|
|
样本
|
20
|
|
试剂二
|
760
|
|
试剂三
|
10
|
|
试剂四
|
10
|
将上述试剂按顺序加入1 ml石英比色皿中，混匀后立即在340 nm波长下记录初始吸光度A1和反应1min后的吸光度A2，计算ΔA=A1-A2。
注意：若A1-A2大于0.5，需将样本用提取液稀释，使A1-A2小于0.5，可提高检测灵敏度。计算公式中乘以相应稀释倍数。
NAD-MDH活力单位的计算：
1、血清（浆）NAD-MDH活力的计算
单位的定义：每毫升血清（浆）每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH（nmol/min/ml）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷V样÷T=6430×ΔA
2、组织、细菌或细胞中NAD-MDH活力的计算:
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH（nmol/min/mg prot）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(V样×Cpr) ÷T=6430×ΔA÷Cpr
（2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每g组织每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH（nmol/min/g 鲜重）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷（W× V样÷V样总）÷T =6430×ΔA÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH（nmol/min/104 cell）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷（2000×V样÷V样总）÷T=3.215×ΔA
V反总：反应体系总体积，8×10-4 L；ε：NADH摩尔消光系数，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V样：加入样本体积，0.02ml；V样总：加入提取液体积，1 ml；T：反应时间，1 min；W：样本质量，g；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；2000：细胞或细菌总数，2000万。
