乙醇含量测定试剂盒说明书
可见分光光度法 50管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
乙醇俗称酒精,是最常见的一元醇,在检测酒的质量、分析血液乙醇含量和果蔬品质判断中通常需要频繁、大量地检测乙醇含量。
1.乙醇是酒的主要成分,是衡量酒质量的重要指标之一。我国是世界上最早发明酿酒的国家,也是酒类产品消费大国,其消费量居世界之首。因此,快速、准确测定酒中乙醇含量,对于确保酒的质量和保护消费者的健康具有重大意义。
2.乙醇是中枢神经系统最基本的抑制物,如果乙醇被大量摄入,会不可逆抑制呼吸甚至导致死亡,血液中乙醇检测结果通常作为认定是否酒后驾驶或醉酒驾驶的依据。
3.乙醇是判断储藏过程中果蔬品质变化的重要指标,研究表明,适当的乙醇处理能够减少腐烂和减轻果蔬生理病害、延缓果蔬成熟和衰老进程,从而延长货架寿命。因此,简便、准确和快速测定果蔬中乙醇含量具有非常重要的意义。
测定原理:
乙醇在乙醇脱氢酶的催化下氧化脱氢生成乙醛,同时,NAD被还原生成NADH,NADH在1-mPMS的作用下使WST-8显橙黄色,通过450 nm下测定吸光值变化可测得乙醇含量。
组成:
产品名称
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CE022-50T/48S
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Storage
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试剂一:液体
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30ml
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4℃
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试剂二:粉剂
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1瓶
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-20℃
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试剂三:液体
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20 ml
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4℃
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试剂四:液体
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3ml
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4℃避光
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说明书
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一份
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试剂二:粉剂×1瓶,-20℃保存;临用前加入15 ml试剂三充分溶解待用,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;
自备仪器和用品:
可见分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰、蒸馏水。
乙醇提取:
1. 组织:按照组织质量(g):蒸馏水体积(ml)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1ml蒸馏水),进行匀浆,8000g,25℃离心10min,取上清待测。
2. 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):蒸馏水体积(ml)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1ml蒸馏水),超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次), 8000g,25℃离心10min,取上清待测。
3. 血清(浆)等液体样品:直接测定。
测定步骤:
1. 分光光度计预热30min以上,调节波长至450nm。
2. 工作液的配制:临用前按照样本数量,按以下比例配制工作液
试剂名称
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体积(μl)
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试剂一
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500
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试剂二
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250
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试剂四
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50
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3. 样本测定
按下表加入如下试剂
试剂名称
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体积(μl)
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样本
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200
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测定工作液
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800
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混匀后记录450nm下测定初始吸光值A1,和37℃避光孵育10min后的吸光值A2,计算
△A=A2-A1。
乙醇含量计算:
标准条件下测定回归方程为y = 0.0512x + 0.0055 R2 = 0.9991;
x为乙醇含量(μmol/ml),y为吸光值差值△A。
1. 按照血清(浆)体积计算
乙醇含量(μmol/ml)= (△A-0.0055)÷0.0512
=19.5×(△A-0.0055)
2. 按照样品质量计算
乙醇含量(μmol/g鲜重)= [ (△A-0.0055)÷0.0512×V1]÷(W ×V1÷V2)
= 19.5×(△A-0.0055)÷W
3. 按照细菌或细胞密度计算
乙醇含量(μmol/104 cell)= [ (△A-0.0055)÷0.0512×V1]÷(500×V1÷V2)
=0.039×(△A-0.0055)
V1:加入反应体系中样本体积,0.2ml;V2:加入提取液体积,1 ml; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万;
注意事项:
测定前取1-2个样做预实验,若△A﹥0.6或乙醇含量﹥10μmol/ml,需将样本用蒸馏水稀释后再测定,以确保测定的准确性。
最低检测限:0.02μmol/ml。