NADH氧化酶（NADH oxidase，NOX）试剂盒说明书
分光光度法 50管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
NOX（EC 1.6.99.3）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，可在氧气存在下，直接将NADH氧化为NAD。该酶不仅参与NAD的再生，而且与免疫反应密切相关。
测定原理：
NOX能够将NADH氧化为NAD，NADH的氧化与2,6二氯酚靛蓝（DCPIP）的还原相偶联，蓝色的DCPIP被还原为无色的DCPIP，在600nm下测定蓝色DCPIP的还原速率计算出NADH氧化酶活性的大小。
组成：
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产品名称
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CE011-50T/48S
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Storage
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试剂一：液体
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50ml
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-20℃
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试剂二：液体
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10ml
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-20℃
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试剂三：液体
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1ml
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-20℃
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试剂四：液体
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50ml
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4℃
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试剂五：液体
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6 ml
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4℃
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试剂六：粉剂
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2瓶
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-20℃
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说明书
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一份
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试剂六：粉剂×2瓶，-20℃保存；临用前每瓶加入5ml蒸馏水；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
自备仪器和用品：
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰、蒸馏水
样本的前处理：
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：
① 准确称取0.1g组织或收集500万细胞，加入1ml试剂一和10μl 试剂三，用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
② 将匀浆600g，4℃离心5min。
③ 弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，11000g，4℃离心10min。
④ 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白，可用于测定从线粒体泄漏的NOX（此步可选做）。
⑤ 步骤④中的沉淀即为线粒体，加入200μl试剂二和2μl 试剂三，超声波破碎（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10秒，重复30次），用于NOX活性测定。
血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤：
1、 分光光度计预热30min以上，调节波长至600nm，蒸馏水调零。
2、 样本测定
（1）试剂四、试剂五和试剂六于37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）孵育5min。
（2）在1ml石英比色皿中加入40μl样本、700μl试剂四、100μl试剂五和160μl试剂六，混匀，记录600nm处20s时吸光值A1和 1min20s后的吸光值A2，计算ΔA=A1-A2。
NOX活力单位的计算:
1、血清（浆）NOX活力的计算:
单位的定义：每ml血清（浆）在每ml反应体系中每分钟A600变化0.01定义为一个酶活力单位。
NOX（U/ml）＝ΔA×V反总÷V样÷0.01÷T=2500×ΔA
2、组织、细菌或细胞中NOX活力的计算:
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每mg组织蛋白在每ml反应体系中每分钟A600变化0.01定义为一个酶活力单位。
NOX（U/mg prot）=ΔA×V反总÷（V样×Cpr）÷0.01÷T=2500×ΔA÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。
（2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每g组织在每ml反应体系中每分钟A600变化0.01定义为一个酶活力单位。
NOX（U/g 鲜重）=ΔA×V反总÷(W× V样÷V样总)÷0.01÷T=505×ΔA÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每1万个细菌或细胞在每ml反应体系中每分钟A600变化0.01定义为一个酶活力单位。
NOX（U/104 cell）=ΔA×V反总÷(500×V样÷V样总)÷0.01÷T=1.01×ΔA
V反总：反应体系总体积，1ml； V样：加入样本体积，0.04ml；V样总：加入提取液体积，0.202 ml；T：反应时间，1 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量；500：细胞或细菌总数，500万。
